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免疫組化代測,免疫組化試劑盒,免疫組化
  • 產(chǎn)品型號:
  • 廠商性質(zhì):經(jīng)銷商
  • 更新時間:2017-03-13
  • 訪  問  量:3248
簡要描述:

免疫組化代測,免疫組化試劑盒,免疫組化是應(yīng)用免疫學(xué)基本原理——抗原抗體反應(yīng),即抗原與抗體特異性結(jié)合的原理,通過化學(xué)反應(yīng)使標記抗體的顯色劑(熒光素、酶、金屬離子、同位素)顯色來確定組織細胞內(nèi)抗原(多肽和蛋白質(zhì)),對其進行定位、定性及定量的研究,稱為免疫組織化學(xué)技術(shù)(immunohistochemistry)或免疫細胞化學(xué)技術(shù)(immunocytochemistry)。

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產(chǎn)品詳情

本產(chǎn)品僅供科研實驗,不得用于醫(yī)療或食用

免疫組化代測,免疫組化試劑盒,免疫組化

免疫組織化學(xué) 分類

  免疫組織化學(xué)技術(shù)按照標記物的種類可分為免疫熒光法、免疫酶法、免疫鐵蛋白法、免疫金法及放射免疫自顯影法等。

 免疫組織化學(xué)作用

  實驗所用的標本

  實驗所用主要為組織標本和細胞標本兩大類,前者包括石蠟切片(病理切片和組織芯片)和冰凍切片,后者包括組織印片、細胞爬片和細胞涂片。

  其中石蠟切片是制作組織標本zui常用、zui基本的方法,對于組織形態(tài)保存好,且能作連續(xù)切片,有利于各種染色對照觀察;還能長期存檔,供回顧性研究;石蠟切片制作過程對組織內(nèi)抗原暴露有一定的影響,但可進行抗原修復(fù),是免疫組化中*的組織標本制作方法。

實驗所用的抗體

  免疫組化實驗中常用的抗體為單隆抗體和多克隆抗體,單克隆抗體是一個B淋巴細胞克隆分泌的抗體,應(yīng)用細胞融合雜交瘤技術(shù)免疫動物制備。多克隆抗體是將純化后的抗原直接免疫動物后,從動物血中所獲得的免疫血清,是多個B淋巴細胞克隆所產(chǎn)生的抗體混合物。

常用的染色方法

  根據(jù)標記物的不同分為免疫熒光法,免疫酶標法,親和組織化學(xué)法,后者是以一種物質(zhì)對某種組織成分具有高度親合力為基礎(chǔ)的檢測方法。這種方法敏感性更高,有利于微量抗原(抗體)在細胞或亞細胞水平的定位,其中生物素—抗生物素染色法zui常用。

免疫組化代測,免疫組化試劑盒,免疫組化操作步驟

  一 免疫組化(LP 法)操作步驟

  1. 切片常規(guī)脫蠟至水。如需抗原修復(fù),可在此步后進行

 ?、?緩沖液洗 3min/2 次。

 ?、?為了降低內(nèi)源性過氧化物酶造成的非特異性背景染色,將切片放在 Hydrogen Peroxide Block 中孵育 10-15 分鐘。

 ?、?緩沖液洗 5min/2 次。

 ?、?滴加 Ultra V Block , 在室溫下孵育 5 分鐘以封閉非特異性的背景染色。

  (注:孵育不要超過 10 分鐘,否則會導(dǎo)致特異性染色降低。如果一抗的稀釋液中含有 5 - 10% 正常羊血清,這一步可以省略。)

 ?、?緩沖液洗 5min/2 次。

 ?、?滴加一抗工作液 37 ℃孵育 1 - 2 小時。(具體孵育時間和溫度由試驗者zui終決定)

 ?、?緩沖液洗 5min/2 次。

  9 . 滴加 Primary Antibody Enhancer(增強子),在室溫下孵育 20 分鐘。

  10 .緩沖液洗 5min/2 次。

  11 .滴加 HRP Polymer(酶標二抗) ,在室溫下孵育 30 分鐘。

 ?。ㄗⅲ篐RP Polymer 對光敏感,應(yīng)避免不必要的光暴露并儲存在不透明的小瓶中。)

  12 .緩沖液洗 5min/2 次。

  13 .向 1ml DAB Plus Substrate (或 AEC Plus Substrate) 中滴加 1-2 滴 DAB Plus Chromogen (或 AEC Plus Chromogen),混勻后滴加到切片上,孵育 3 - 15 分鐘。(具體時間由染色深淺決定。)

  14 .自來水充分沖洗,復(fù)染,脫水,透明,封片。

二.免疫組化主要步驟
1.        洗載玻片:將載玻片置于重鉻酸鉀和濃H2SO4混合液中,目的是為了是載玻片上的硅膠等除去,同時使一些肉眼看不見的凹凸不平的表面變平整,便于組織吸附,然后置于清水中清洗,除去殘余的重鉻酸鉀和濃H2SO4(大約沖一個小時左右),再將載玻片浸泡于酒精之中, 然后放到架子上,置于37°C溫箱中,將多聚賴氨酸涂布于玻片的表面,由于Lys帶正電,而大多數(shù)的組織帶負電荷,從而產(chǎn)生吸附作用。
2.        包埋組織:先在鐵模具中加入一些液態(tài)石蠟,先稍微冷卻,然后再將待包埋的組織置于石蠟之中,并排列整齊,再將塑料模具盒蓋上,zui后加入少許液體石蠟,進行冷凍,使石蠟變成固態(tài)。
3.        切片:將包埋好的組織從模具上取下來,并置于石蠟切片機上,切片機通過調(diào)節(jié)上下左右來來使組織和切割方向*,然后調(diào)節(jié)切片的厚度,一般為5µm,如果比較難切,則可以適當調(diào)整厚度,用毛筆將切割的載玻片向外拉,并用小鑷子將包含有完整組織的載玻片置于40°C溫水中。
4.        撈組織:當組織載玻片置于40°C溫水中之前,要先將水浴中的氣泡趕走,以免氣泡受熱上浮而貼到組織上,組織受熱展開,是組織不起皺紋,用載玻片撈組織時,一般取載玻片的下1/3或者下1/2一般每種組織撈5-6張,其中2-3張是備用的,每張載玻片上通常撈兩份組織,做對照使用,這樣形成的誤差就比較小了,而且撈載玻片的時候方向*,以便觀察,再將撈出來的載玻片置于架子上,放入37°C溫箱中烘干。
5.        脫蠟:依次將載玻片放入二甲苯-二甲苯-100%酒精-100%酒精-95%酒精-90%酒精-80%酒精-70%酒精,起脫蠟作用的主要是二甲苯,依據(jù)的是相似相溶的原理.一般在每個試劑中放10min,天氣熱可以少放幾分鐘,相反,天氣較冷的話,就要適當延長脫蠟時間,一般為12-15min.
6.        抗原修復(fù):脫蠟后在清水中沖洗一段時間,加入3%H2O2浸泡10min,從而除去內(nèi)源性的過氧化氫酶,然后倒掉H2O2,在清水中洗兩次,再加入檸檬酸緩沖液,放入微波爐中蒸煮3min(中火),一般剛到沸騰即可,冷卻至室溫,然后再蒸煮一次,冷卻至室溫,蒸煮的目的是為了使抗原的位點暴露出來。
7.        血清封閉:冷卻至室溫后,將檸檬酸緩沖液倒掉,水洗2次,并將載玻片置于PBS中5min,洗2次,擦干組織周圍的PBS液,馬上加上血清,使一些非特異性的位點封閉起來,然后放入37°C溫箱中半小時。血清稀釋10倍(900µlPBS:100µl血清封閉液)。
8.        加一抗:將溫箱中的載玻片取出,用吸水紙擦干載玻片反面和正面組織周圍的血清,加一抗,如果做對照實驗,就在對照的組織上加PBS。加完一抗后于4°C冰箱中保存過夜。
9.        加二抗:將載玻片從冰箱中取出,放入PBS中洗3次,每次5min,擦干組織周圍的PBS后加上二抗,然后置于37°C溫箱中半小時。
10.        加SABC:將片子從溫箱中取出, 放入PBS中洗3次,每次5min,擦干組織周圍的PBS后加上SABC, 然后置于37°C溫箱中半小時。SABC稀釋100倍(990µlPBS:10µlSABC)。
11.        加顯色劑:將片子從溫箱中取出, 放入PBS中洗3次,每次5min,擦干組織周圍的PBS后加上顯色劑。(顯色劑的配置:在1ml水中加1滴顯色劑A,搖勻,然后加1滴顯色劑B,搖勻,再加1滴顯色劑C,搖勻)   A:DAB        B:H2O2        C:磷酸緩沖液
12.        復(fù)染:將顯色后的片子用清水沖洗一段時間后,浸泡于蘇木精中染色,一般動物組織為半分鐘,植物組織3-5min。
13.        脫水:將復(fù)染后的片子置于水中沖洗后,依次將載玻片放入70%酒精-80%酒精-90%酒精-95%酒精-100%酒精-100%酒精-二甲苯-二甲苯。每個試劑中放置2min,zui后浸泡在二甲苯中,搬到通風柜中。
14.        封片:用中性樹膠滴在組織旁邊,再用蓋玻片蓋上,要先放平一側(cè),然后輕輕放下另一側(cè),以免產(chǎn)生氣泡,封好片子后置于通風柜中晾干。
 

三. 免疫組化染色步驟

  冰凍切片 4-8um ,室溫放置 30 分鐘后,入 4 ℃丙酮固定 10分鐘,PBS洗,5分鐘x3,用過氧化氫孵育5-10分鐘,消除內(nèi)源性過氧化物酶的活性。

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